海参多肽的研究进展
童静静1 ,章元炳2 ,叶再镯2 ,冯凤琴1
( 1.浙江大学生物系统工程与食品科学学院,浙江杭州 310058;
2.宁波超星海洋生物制品有限公司,浙江宁波 315000)
摘 要: 海参多肽是以新鲜海参为原料,经过蛋白酶酶解,分离纯化得到的具有功能特性的生物活性物质,研究发现海参多肽具有抗氧化、降血压、抗肿瘤、抗疲劳等多种功能。本文综述了不同种类的海参多肽的生物活性、制备与精制方法以及结构鉴定等方面的研究进展。Research progress in sea cucumber polypeptideTONG Jing-jing1 ,ZHANG Yuan-bing2 ,YE Zai-zhuo2 ,FENG Feng-qin1( 1.School of Biosystems Engineering and Food Science,Zhejiang University,Hangzhou 310058,China;2.NingBo Chaoxing Marine Biological Products Ltd.,Co.,Ningbo 315000,China)Abstract: Sea cucumber polypeptides is a biological active substance which is obtained from hydrolyzing,separating,and puriying of fresh sea cucumber. It has the functions of antioxidation,antihypertension,antitumor and antifatigue etc. The biological function,refining and structure identification of sea cucumber polypeptide were reviewed in this paper.Key words: sea cucumber polypeptide;biological function; refining; structure identification文 章 编 号:1002-0306(2013) 11-0356-05 海参(seacucumber,Ludwigothureagrisea)属棘皮动物门、海参纲动物,根据海参的外部特征,将其分为四个目九个科(枝手目:瓜参科、沙鸡子科、高球参科;楣手目:辛那参科、海参科、刺参科;芋参目:芋参科;无足目:锚海参科、指参科)。全世界约有1100种海参,其中40种可食用,我国有100多种,其中20多种可食用[1]。干制的海参蛋白质的成分很高,接近90%,多糖6%左右,脂质约占4%,含有少量核酸以及钙、镁、铁、锰、锌、铜、钼、硒等微量元素[2]。不同种类的海参由于生长环境的不同,其营养价值和生物活性也有所差异,其中以刺参营养价值最高,属于海参中的精品,被称为“参中之冠”[2]。自古以来,海参作为营养食品和保健食品被广泛使用,海参常被制成海参干粉、海参熟制品、海参罐头等,大量的应用是把海参作为食品原料进行简单的初级加工。海参多肽是以新鲜海参为原料,经过蛋白酶酶解,分离纯化得到的具有功能特性的生物活性物质,研究发现海参多肽具有抗氧化、降血压、抗肿瘤、抗疲劳等多种功能。本文主要对海参多肽的生物活性以及制备分离纯化方法进行介绍为海参多肽在食品、医药、保健品等行业的应用提供依据和思路。生物体内氧自由基( oxygen-derivedfreeadicals.OFR ),主要包括超氧阴离子(O2-·)、羟自由基(·OH)、羟过氧自由基(HOO·)、有机过氧自由基(ROOy)等,在生物体内不断产生,也不断地被分解,处于动态平衡之中,维持在一个正常的生理水平上。若体内自由基过量,可损伤体内的蛋白质、核酸和生物膜,引起各种疾病。而自由基清除剂可清除体内自由基,保护机体免受氧化损害。因此,近年来,对体内自由基清除剂的研究备受关注,如超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)、过氧化氢酶(catalase,CAT)、谷胱甘肽过氧化物酶(glutathione peroxidase,GSH-PX)、抗氧化剂谷胱甘肽(glutathione,GSH)和维生素等[3]。海参是一种高蛋白低脂肪的食品,不仅体腔液内GSH以及总抗氧化能力的含量高[4],而且动物实验证明海参多肽可以提高机体内的抗氧化酶的酶活。侯付景等[5]通过小鼠喂养实验表明东海乌参(Acaudina leucoprocta)水解液使小鼠血清和肝脏组织中的SOD、GSH-PX活力明显提高,MDA(丙二醛)含量显著降低,有效清除体内堆积的自由基。有关研究表明,海参多肽抗氧化性的强弱主要与多肽的氨基酸组成、氨基酸序列以及空间构象有关[6]。而目前研究主要集中在不同海参多肽的抗氧化能力与多肽分子量和浓度之间的关系,赵玲等[7]测定比较了大西洋海参(Holothuria coluber Semper)、东海海参(Acaudina mobpadioides Semper )、刺参(Apostichopus japonicus)和加州拟刺参(Parastichopus californicus)这 4 种海参多肽的抗氧化活性,其结果显示大西洋海参多肽、刺参多肽和加州拟刺参多肽分别对·OH、DPPH·(1,1-二苯基-2-三硝基苯肼自由基)和O-·的清除能力最强。不仅新鲜海参多肽具有良好的抗氧化能力,有研究表明带有内脏的干制海参制备的多肽具有更高的抗氧化能力[8],并且不同浓度海参多肽抗氧化能力也不同。苏永昌等[9]的研究表明随着海地瓜(Acaudina molpadioides)多肽浓度的增加,多肽对羟自由基的清除能力迅速上升,当多肽浓度大于20mg/mL,多肽清除羟自由基能力则表现为平缓的上升趋势,其清除羟自由基和超氧自由基的IC50 (hal fmaximal inhibitory concentration of a substance,半抑制浓度)分别为12.5、23.6mg/mL。此外,王静等[10]还发现不同分子量海参(Apostichopusjaponicus)多肽清除·OH、O-·、HO的IC也不同,其结果表明:4种分子量范围的海参多肽清除3种氧自由基的能力存在差异,大小顺序为CPHIV(<3ku)>CPHIII(3~5ku)>CPHII(5~10ku>CPHI(>10ku),分子量越小的海参多肽清除3种氧自由基的能力越大,4 种分子量范围的海参多肽清除O-·的效果最好,其次是H2O2,最后是·OH。随着人们生活水平的不断提高,高蛋白、高脂肪的摄食越来越大众化,高血压的患病率也逐步上升。血管紧张素转换酶(Angiotension-Ⅰ-converting Enzyme,ACE)是肾素-血管紧张素系统(Renin-Angiotensnisystme,ARS)和激肽释放酶-激肽系统(Kal1ikrein-KininSystme,KKS)的关键酶[11],在ARS中,ACE将无升压活性的血管紧张素Ⅰ水解为具有升压活性的血管紧张素Ⅱ,在KKS中,ACE使具有降压活性的缓激肽降解失去降血压活性。通过以上两个途径,ACE参与体内血压调节,造成血压的升高,引发高血压[12]。海参多肽作为一种有效的 ACE 抑制剂,就是通过抑制血浆和血管内皮细胞 ACE 的活性从而达到降低血压的目的的。有研究表明,分子量 <2ku 的海参多肽具有较强的 ACE 抑制活性,其中海地瓜体壁蛋白水解物 <2ku 的多肽 ACE 抑制活性的 IC50 值达0.615mg / mL[13]。不同酶的酶活和作用位点的不同导致酶解产物的分子量分布不同,影响其 ACE 抑制活性。赵元晖等[14]比较了Ⅰ型胶原酶、胰蛋白酶、木瓜蛋白酶、菠萝蛋白酶、3942 中性酶、Alcalase 2.4L 六种海地瓜蛋白水解液 ACE 抑制活性的大小,结果表明: 6 种蛋白酶水解液对 ACE 抑制效果从大到小依次为: 菠萝蛋白酶水解液 > Ⅰ 型胶原酶水解液 > Alcalase 酶水解液 > 3942 中性酶水解液 > 木瓜蛋白酶水解液 > 胰蛋白酶水解液。Forghania[15]也比较了糙海参(Golden sea cucumber) 六种不同酶酶解液的ACE 抑制活性的大小,发现碱性蛋白酶酶解液具有最高的 ACE 抑制活性,IC50 达 0.41mg / mL,其次为风味蛋白酶,然后是菠萝蛋白酶和木瓜蛋白酶,最后为胰蛋白酶和复合蛋白酶。海地瓜酶解物经过类蛋白反应(类蛋白反应是指利用浓缩的蛋白质在合适的条件下经蛋白酶的作用合成的类蛋白产品)修饰后, ACE抑制活性能够明显升高[16]。ACE抑制活性的大小主要与其ACE抑制肽的C-末端氨基酸序列有关,其中主要与三肽序列有关,Monti 等[17]研究证实, ACE 抑制肽的 C-末端三肽序列含疏水性氨基酸(芳香族氨基酸或带支链氨基酸),活性较强,若其中C-末端三肽序列中含有一个脯氨酸或者含有一个带正电的氨基酸如赖氨酸(ε-氨基带正电荷) 、精氨酸(胍基带正电荷) ,其活性也会明显增强。海参多肽除具有抗氧化和降血压活性之外,还具有降血脂、抗疲劳、抗癌以及镇痛等生物活性。Rodriguez 等[18-19]将从海参( Holothuria forskali) 酶解液中提取的多肽喂养大鼠,检测其对大鼠血脂的影响,结果显示海参多肽在明显升高血清高密度脂蛋白的含量的同时降低血清甘油三酯的的水平,从而达到降血脂的效果。王海涛等[20]研究结果发现刺参( Apostichopus japonicus) 多肽具有比较好的抗疲劳的效果,其作用机理主要为能够显著降低运动后小鼠的血尿素氮含量以及提高其肝糖原含量,且功效随着灌胃剂量的提高而增强。付学军[21]进一步研究了不同浓度的低分子量的海参肽对小鼠抗疲劳的作用,结果发现低分子量的海参肽对小鼠的体重没有明显的影响,具有显著的抗疲劳作用。王奇等[22]也验证了海参的抗疲劳活性,通过动物实验还发现东海海参多肽能够提高小鼠的记忆力,其作用机制可能是上调小鼠内记忆相关基因转录水平的表达。卢 连华[23]和谢永玲[24]研究了海参肽对小鼠的免疫调节功能的影响,结果表明海参肽能够增强小鼠体液免疫功能、非特异性免疫功能以及自然杀伤( HK) 细胞。王 奕[25]通 过 动 物 实 验 研 究 日 本 刺 参 (Apostichopus japonicus) 多肽的抗肿瘤作用,结果表明不同剂量组的日本刺参胶原蛋白多肽均能够显著抑 制小鼠 S180 肉瘤的生长。有研究还表明鲜海参的提取物对体外培养的人胃癌细胞栋(MGC) 、人肝癌细胞株(7402) 以及小鼠的乳腺肉瘤细胞栋(EMT6) 的生长有显著的抑制作用[26]。Shinichi 等[27]还从日本刺参中分离出一种五肽和七肽,其研究结果表明这两种小分子的多肽能够促进生殖细胞的形成和卵 母细胞的成熟。除此之外,Ridzwan[28]利用动物实验证明玉足海参(Holothuria leucospilota) 、图纹白尼参 (Bohadschia marmorata) 的 水 提 取 物、糙 刺 参(Stichopus hermanii) 的腹腔液都具有良好的镇痛作用。海参多肽的多种生物活性正在逐渐被人们认识,大量的动物实验证明了海参作为保健品和功能食品的潜力。近年来,对于不同种类海参多肽的制取、精制已经有较多的报道,但是对于其活性结构的鉴定研究才刚刚开始。目前,海参多肽的制取常采用酶解法,制备不同生活活性的海参多肽选择的酶也不尽相同,常采用复合蛋白酶和中性蛋白酶; 精制主要围绕脱盐、脱色进行,常用活性炭或者大孔树脂物理吸附进行脱色,柱层析进行脱盐,制备高商品性状的产品。生物活性肽的生产方法主要包括从自然界中提取天然活性物质、蛋白质降解以及化学合成法[29]。其中,在海参多肽的制取过程中,应用最成熟的技术 为蛋白质定向酶切,即利用不同的酶或者微生物对海参进行蛋白质降解获得具有不同功能的生物活性 多肽[30]。在酶解过程中,通过酶种类的选择,酶解条件的控制(加酶量、反应温度、反应时间、底物浓度) 来得到具有特定生理功能的生物活性肽[31]。向怡卉等[32]利用复合蛋白酶水解海参生殖腺, 制得水解度达 50% 的海参蛋白液。水解度是衡量水解程度的一个重要指标,水解度越高,水解得越彻底,但多肽的含量不一定高。因此,为了得到更高含 量的多肽,张彧等[33]选择多肽得率作为目标来控制海参的酶解,得到多肽的得率为 42% 左右的海参多肽。海参多肽的肽链中含有羟基、氨基和羧基等多种亲水基团,能够与水分子结合,是很好的吸湿剂, 同时由于其分子量小,很容易被皮肤吸收,不但维持 肌肤的吸水还具有良好的保湿效果,因此,其吸湿性 和保湿性同样受到人们的关注,朱洪珍等[34]选择中性蛋白酶对海地瓜进行酶解,得到吸湿率和保湿率分别为 6.11% 和 81.23% 的海地瓜胶原蛋白多肽。人们在研究选择合适的外加酶进行海参多肽的酶解的 同时也在关注海参自身的酶对其酶解的影响。郑杰 等[35]的研究进一步验证了海参肠内酶的作用,其研究表明,海参肠自溶水解物具有一定的 DPPH·(1,1-二苯基-2-三硝基苯肼自由基) 清除能力、Fe2+螯合能力和还原能力。结合之前的研究以及实际生 产的需要,王静等[36]将海参体内酶与外加酶结合使用,将完整的海参匀浆后诱导其自溶,以自溶后水解液为底物,加入复合蛋白酶进行二次水解,从而提高酶解效率,二次水解后海参多肽的得率从 34% 提高到约为 60% 。海参多肽的精制过程一般包括预处理、分离、纯 化和纯度测定四个阶段,其中纯化是最为关键的阶段。利用酶解法制备海参多肽的过程中主要存在着 盐含量过高、颜色过深等问题,因此海参多肽的纯化主要围绕着脱盐、脱色进行。在酶解过程中,根据不同的酶的最适 pH,必须通过不断的加酸或者碱来维持体系 pH 的稳定,因此水解物中含有一定量的盐分,这些盐分对海参多肽的理化性质、适用范围和生物活性产生影响。目前常用的脱盐的方法有离子交 换树脂法、透析法和超滤法。王静等[36]采用透析法和超滤法对刺参多肽进行脱盐纯化,脱盐率达到85% 左右。海参体壁的大量色素经过酶解沉积到海参多肽中,导致海参多肽颜色过深影响其开发利用,张翠玉等[37]研究了 NKA-9、AB-8、D392、D280、D101、D315 六种不同的大孔树脂对海地瓜多肽的脱色效果。结果表明: 树脂 D392 可较好的用于海地瓜多肽的脱色,脱色率达到 83. 2% ,多肽保留率为80.5% 。海参经过酶解得到多肽的分子量分布大约为500~3000u,分子量的不同对多肽的抗氧化性、ACE抑制活性等功能都有影响,分离并纯化不同分子量范围的多肽对研究其生物活性具有重要意义,目前常用的纯化方法主要有: 柱层析、高效液相色谱、聚丙烯酰胺凝胶电泳等。赵元晖等[14]利用 Sephadex G-25 凝胶柱层析、SP Sephadex C-25 阳离子交换层析、反相高效液相色谱层析对海地瓜复合酶水解产物进行分离纯化,得到两种高活性、高纯度的ACE 抑制肽。王洪涛等[38]将海参酶解液先经过醇沉、离心分离海参多肽和蛋白,再对海参蛋白和多糖分别进行纯化,得到较高纯度的海参多肽和多糖,使得海参的营养价值得到更好地应用。迄今为止,国内外的学者主要对海参中的一些活性成分比如海参多糖的提取、分离纯化以及结构鉴定进行了较多的报道,但是对于海参多肽的结构组成的研究比较少。有研究表明,海洋多肽的生物活性与多肽的氨基酸序列、多肽的结构、疏水性以及 所带的电荷有关[39],因此测定海参多肽的结构为我们更好的研究海参生物活性提供基础。目前国外学者对氨基酸序列的测定做了大量的工作,Birenhenide[40]从海参中分离出两种多肽,一种为 Pro-Leu-Gly-Tyr-Met-Phe-Arg,另一种为Pro-Leu-Gly-Tyr-Met-Phe-Arg,属于神经肽类,主要影响海参真皮的硬度及弹性。Miranda[41]从海参(Holothuria glaberrima) 中分离出两种肽,一种为Gly-Phe-Ser-Lys-Leu-Tyr-Phe- NH2,命名为GFSKLYFamide,另一种为 Ser-Gly-Tyr-Ser-Vak-Leu-Tyr-Phe-NH2,命名为 SGYSVLYFamide,其中 GFSKLYFamide 对海参神经肌肉的结缔组织有重要影响。Sunil Kumar 等[42]从海参(Caudina Arenicola) 中分离出一种四肽,经测定得出其结构为Pro-Glu-Leu-Leu,是 C 球蛋白的 94-97 片断。我国学者 Liu Zunying 等[43]从巨型红海参(Parastichopus californicus) 中提取胃蛋白酶可溶性胶原蛋白属于Ⅰ型胶原蛋白,但在氨基酸组成与Ⅰ型胶原蛋白有一些不同。赵元晖等[14]应用纳升电喷雾—四极杆—飞行时间串联质谱( Nano-ESI-Ms / Ms) 技术,对从海地瓜中分离得到的 ACE 抑制肽 P1、P2进行结构鉴定。P1的精确分子量为 1629.7u,氨基酸序列为 YYLEMDFLLFNY; P2的精确分子量为1034.5u,氨基酸序列为 MEGAQEAQGD。但是海参多肽的氨基酸序列和结构对其生物活性的具体影响机制还需要进一步的研究。近年来,海参多肽的研究取得了较大的进展,但和某些功能性多肽的研究相比,还存在着一定的差距。对于不同种类海参多肽的提取条件的优化、分离纯化和生物活性等方面的研究已较为成熟,而其结构测定和构效关系的研究却非常有限。目前,虽然人们对海参多肽的生理功能做了大量的研究,但是大部分研究比较浅显,对具体的作用过程和作用机制了解的不够详细。此外,海参种类繁多,目前的研究也大部分局限在一些价格比较昂贵的海参品种上,比如刺参、糙参,还有其它品种的海参需要进行进一步的开发和利用。不同海参多肽的结构测定: 从目前的研究来看,由于海参的种类繁多,不同种类海参多肽的结构不同,不同水解程度得到的不同分子量的多肽的结构也不同,从而增加了海参多肽结构测定的难度。但是海参多肽的结构是其生理功能的基础,更深入的工作有待于进一步开展。海参多肽的修饰与构效关系的研究: 多肽的修饰可能导致其生物活性发生变化,比如多肽的修饰可以使活性低或者不具有活性的海参多肽具有较高的活性,因此对其构效关系的研究有助于海参多肽以及其衍生物的制备。海参多肽生物活性的作用机制的研究: 目前对于海参多肽的生物活性的研究的文章较多,但只通过实验报道了结果以及可能的作用机制。对于海参多肽作用机制的更全面系统的报道需要进一步的探讨。应用研究: 进一步开发其它种类的海参多肽,研究海参多肽的功能性成分的高效制取和分离纯化,实现海参多肽的大规模生产,并应用于食品和医药制品中,发挥其更加重要的作用。[1]马天舒,葛迎春 .海参活性物质的药理研究进展[J].特产研究,2003( 1) : 57-60.[2]樊绘曾 .海参: 海中人参—关于海参及其成分保健医疗功能的研究与开发[J].中国海洋药物杂志,2001( 4) : 38-44.[3]赵芹 .海参胶原蛋白多肽抗氧化的研究[D].青岛: 中国海洋大学,2008.[4]Hawa I,Zulaikah M,Iamaludin,et al. The potential of the coelomic fluid in sea cucumber as an antioxidant[J].Mal J Nutr, 1999,5: 55-59.[5]侯付景,金春华 .响应面分析法优化海地瓜酶解工艺及其抗氧化活性的研究[J].营养学报,2010,32( 3) : 276-280.[6]Kong Xiangzhen,Zhou Huiming,Hua yufei.Preparation and antioxidant activity of wheat gluten hydrolysates ( WGHs) using ultrafiltration membranes[J].Journal of the Science of Food and Agriculture,2008,88( 5) : 920-926.[7]赵玲,殷邦忠,刘淇,等 .4 种海参多肽抗氧化活性的比较研究[J].中国海洋药物杂志,2012,31( 2) : 19-24.[8]Ying Zhong,Muhammad Ahmad Khan,Fereidoon Shahidi. Compositional Characteristics and Antioxidant Properties of Fresh and Processed Sea Cucumber ( Cucumaria frondosa) [J].Agric Food Chem,2007,55: 1188-1192.[9]苏永昌,刘淑集 .海参多肽的制备工艺优化及其抗氧化测定[J].福建水产,2009( 2) : 6-10.[10]王静,金海珠 .海参多肽的抗氧化性能研究[J].食品与机械,2010( 3) : 67-71.[11]于江虹,赖旭新 .降血压肚的生理活性及应用[J].中国食品添加剂,2000( 2) : 11-14.[12]Richard J F,Brain A M,Daniel J W. The emerging role of dairy protein and bioactive peptides in nutrition and health[J].J Nutri,2004,134( 4) : 980-988.[13]赵元晖,李八方,曾名湧,等 . 一种低值海参蛋白酶解物降血压活性的研究[J].渔业现代化,2009,36( 1) : 56-59.[14]赵元晖 .海地瓜蛋白水解物中 ACE 抑制肽的分离纯化及合成[D].青岛: 中国海洋大学,2008.[15]Bita Forghania,Afshin Ebrahimpoura,Jamilah Bakarb,et al. Enzyme Hydrolysates from Stichopus horrens as a new Source for 1 Angiotensin Converting Enzyme Inhibitory Peptides [J]. Evidence- based Complementary and Alternative Medicine,2012 ( 10) : 1155-1163.[16]朱小杰,曾名湧,马桂兰,等 . 海地瓜蛋白酶解物类蛋白反应修饰及其对 ACE 活性的影响[J]. 中国海洋药物杂志, 2011,30( 6) : 6-12.[17]Monti J C,Jost R.Papain- catalyzed synthesis of methionine– enriched soy plasteins. Average chain length of the plastein peptides[J].Agric Food Chem,1979,27( 6) : 1281-1285[18]Rodriguez E. Nutritional value of Holothuria forskali protein and effects on serum lipid profile in rats[J].Physiol Biochem, 2000,56: 39-43.[19]Taboada M C,Gonzalez M,Rodriguez E.Value and effects on digestive enzymes and serum lipids of the marine invertebrate Holothuria forskali[J].Nutrition,Res,2003,23: 1661-1670.[20]王海涛,金海珠 . 海参肽的酶法制备工艺及抗疲劳活性研究[D].烟台; 烟台大学,2007.[21]付学军,崔志峰 . 小分子量海参肽对小鼠的抗疲劳作用[J].食品科技,2007( 4) : 259-261.[22]王奇,李妍妍,芦红艳,等 . 东海海参酶解液提高小鼠记忆力和抗疲劳功能的研究[J]. 营养学报,2011,33 ( 6 ) : 580-583,588.[23]卢连华,周景洋,颜燕,等 . 海参肽对小鼠免疫调节及抗疲劳能力的影响[J].山东医药,2009,49( 25) : 35-37.[24]谢永玲,张明月,张静,等 . 海参肽对小鼠的免疫调节作用[J].中国海洋药物杂志,2009,28( 4) : 43-45.
[25](王奕) .日本刺参胶原蛋白多肽和鱿鱼皮胶原蛋白多肽护肤活性的研究[D].青岛; 中国海洋大学,2007.[26]尹钟洙,邵金莺,张磊,等 . 刺参提取物药理作用的研究[J].中药药理与临床,1990,6: 33-34
[27]Shinichi Kato,Saori Tsurumaru,Makoto Tage,et al.Neuronal peptides induce oocyte maturation and gamete spawing of sea cucumber,Apostichopus japonicus[J].Developmental Biology, 2009,326( 1) : 169-176.[28]Ridzwan B H,Leong T C,Idid S Z. The antinociceptive effects of water extracts from sea cucumber Holothuria leucospilota Brandt,Bohadschia marmorata vitiensis Jaeger and coelomic fluid from Stichopus hermanii [J].Pakistan Journal of Biological Sciences,2003,6( 24) : 2068-2072.[29]Gill I,Lopez - Fandino R,Jorba X. Biologically activepeptides and enzymatic approaches to their production[J].Enzyme Microbial Technolgy,1996,18: 162-183.[30]Seebach D,Albert M,Arvidsson PI,et al. From the biopolymer PHB to biological investigations of unnatural β- andγ- peptides[J]. CHIMIA International Journal for Chemistry, 2001,55( 4) : 345-353.[31]AIfonso C.Enzymatic protein hydrolysates in human nutrition[J].Trends in Food Science &Technology,2000( 11) : 254-262.
[32]向怡卉,苏秀榕,董明敏,等 . 复合蛋白酶水解海参生殖腺工艺的研究[J].食品工业科技,2007,28( 3) : 143-146.
[33]张彧,农绍庄,朱蓓薇,等 . 海参蛋白酶解工艺条件的优化[J].大连轻工业学报,2001,20( 2) : 105-108.
[34]朱洪珍,刘淑集,吴成业,等 . 海地瓜中具吸湿保湿特性的胶原蛋白肽提取工艺研究[J]. 福建水产,2011,33 ( 5 ) : 24-30.
[35]郑杰,吴海涛,朱蓓薇,等 . 海参肠自溶水解物抗氧化活性的研究[J].大连工业大学学报,2011,( 5) : 313-317.[36]王静 . 海参多肽的酶法制备及体外抗氧化性能的研究[D].烟台: 烟台大学,2010.[37]张翠玉,王彦超,薛长湖,等,大孔树脂对海地瓜多肽脱色工艺的研究[J].食品发酵与工业,2011,37( 7) : 77-81.
[38]王洪涛,付学军,申京宇,等 .海参多肽、多糖综合提取工艺条件的优化[J].食品与生物技术学报,2005,25( 6) : 83-86.[39]Birenheide R,Tamori M,Motokawa T. et al. Peptides controlling stiffness of connective tissue in sea cucumbers[J]. Biology Bull,1998,194( 3) : 253-259.
[40]Elias R,Kellerby S,Decker E.Antioxidant activity of proteins and peptides[J].Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 2008,48( 5) : 430-441.[41]Díaz Miranda L,García Arrarás J E. Pharmacological action of the heptapeptide GFSKLYFamide in the muscle of the sea cucumber Holothuria glaberrima ( Echinodermata)[J]. Comp Biochemistry Physiology,1995,110C( 2) : 171-176.[42]Sunil Kumar P N,Sadasivan C,Devaky K S. Conformational analysis of sea cucumber ( Caudina Arenicola) C globin 94 - 97 fragment[J].Protein and Peptide Letters,2002,9( 5) : 403-409.[43]Zunying liu,Alexandra C M,Oliveira,et al. Purification and Characterization of Pepsin - Solubilized Collagen from Skin and Connective Tissue of Giant Red Sea Cucumber ( Parastichopus californicus) [J].Agric Food Chemistry,2010,58: 1270-1274.